細(xì)胞基因藥物的基因遞送有病毒及非病毒兩種方式，其中病毒遞送更為常用。在病毒遞送路徑中，腺相關(guān)病毒（AAV）和慢病毒（Lentivirus）是常用的兩種載體；差別是病毒基因組的存在形式，AAV的基因組一般不整合到染色體中，以游離形式存在于染色體之外，且一般會(huì)表達(dá)數(shù)年之久；而慢病毒的基因組則會(huì)整合到染色體達(dá)到長(zhǎng)期持續(xù)表達(dá)的目的。此外，其它用于基因藥物的病毒載體有單純皰疹病毒（HSV）、痘苗病毒（Vaccina Virus）、痘病毒（Poxviruses）。致力于從深海微生物中識(shí)別新的冷適應(yīng)酶，用于分子研究、體外診斷和制藥領(lǐng)域。山西基因藥物生產(chǎn)用高鹽核酸酶70921

有研究發(fā)現(xiàn)，桿狀病毒表達(dá)載體體系BEV生產(chǎn)的rAAV發(fā)生了與293生產(chǎn)體系不同的衣殼蛋白翻譯后修飾（post-translationalmodifications,PTMs）。這一差異是否會(huì)影響載體趨向性和轉(zhuǎn)導(dǎo)效率還需要進(jìn)一步驗(yàn)證。除此之外，桿狀病毒多重infection會(huì)導(dǎo)致載體蛋白VP1、VP2和VP3比例不一致。盡管如此，BEV/Sf9系統(tǒng)仍然是一種頗有吸引力的大規(guī)模臨床級(jí)載體生產(chǎn)策略。隨著以后對(duì)基因藥物需求的增加，AAV載體的需求量也會(huì)與日俱增，而B(niǎo)EV系統(tǒng)能夠降低AAV的成本，未來(lái)還是很有發(fā)展?jié)摿Φ?。海?00mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-160鑒于生物制品藥物更嚴(yán)格的質(zhì)量要求，廠家對(duì)SAN HQ高鹽核酸酶的生產(chǎn)及質(zhì)控符合更高標(biāo)準(zhǔn)。

核酸酶活性受到很多因素影響，如鹽濃度、pH、底物、溫度等。因此，不同客戶(hù)、不同項(xiàng)目中核酸酶的使用條件都不一樣。目前，生物制藥行業(yè)對(duì)Benonase全能核酸酶的使用比較熟悉，如生理鹽或低鹽濃度、脫鹽操作等。對(duì)于AdV/AAV等項(xiàng)目，使用SAN HQ高鹽核酸酶替代Benzonase時(shí)，只需提高反應(yīng)體系總鹽濃度到400mM-500mM即可，溫度、Mg2+濃度等條件不用做任何調(diào)整，同樣酶量的SAN HQ對(duì)宿主細(xì)胞DNA（HCD）的去除效果更好、病毒載體得率更高。經(jīng)過(guò)工藝優(yōu)化后，可以將SAN HQ高鹽核酸酶的用量減少到原來(lái)的1/3-1/4，且HCD去除效果及產(chǎn)品得率更高。

一個(gè)美國(guó)客戶(hù)做了對(duì)照實(shí)驗(yàn)，比較Benzonase和SAN HQ高鹽核酸酶純化病毒載體的效率。實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)如下，HEK293細(xì)胞轉(zhuǎn)染及培養(yǎng)后，分別取了150Million的293細(xì)胞進(jìn)行裂解，分別在各自適宜的條件下（即SAN HQ組反應(yīng)條件為500mM鹽濃度，而B(niǎo)enzonase組反應(yīng)條件是150mM鹽濃度）加入等量的酶（0、2kU、3kU、4kU、5kU、6kU），37°孵育1hr，加入Picogreen染料后檢測(cè)DNA的殘留量。結(jié)果發(fā)現(xiàn)，SAN HQ高基因療法制造商面臨的挑戰(zhàn)與抗體療法剛出現(xiàn)時(shí)單克隆抗體制造商面臨的挑戰(zhàn)相似。例如，在生產(chǎn)、儲(chǔ)存和處理過(guò)程中，單克隆抗體也會(huì)受到低滴度、產(chǎn)品和工藝相關(guān)雜質(zhì)和降解的挑戰(zhàn)。盡管與重組單克隆抗體相比，單劑量AAV產(chǎn)品與工藝相關(guān)雜質(zhì)相關(guān)的風(fēng)險(xiǎn)可能更低（取決于雜質(zhì)的類(lèi)型、劑量和給藥途徑），但這也不能忽視。由于這些相似性，制藥商、化學(xué)品和輔料供應(yīng)商有機(jī)會(huì)進(jìn)行合作，并開(kāi)發(fā)創(chuàng)新的解決方案，以實(shí)現(xiàn)穩(wěn)健和成本效益高的AAV產(chǎn)品生產(chǎn)。鹽核酸酶組用更少的酶得到了更好的去除效果（即2kU的SAN HQ消化結(jié)果明顯優(yōu)于6kU的Benzonase），且SAN HQ的高純化效率是非血清型依賴(lài)的。SAN HQ高鹽核酸酶有助于減少了宿主細(xì)胞殘留DNA的污染，提高了基因藥物的安全性。

AAV病毒滴度通常分為物理滴度和infection滴度。物理滴度一般是指基因組滴度或者衣殼滴度。在測(cè)定AAV的含量時(shí)，通常采用基因組滴度或者衣殼滴度作為單位，其中基因組滴度為攜帶基因組的AAV的濃度，衣殼滴度為AAV物理顆粒的濃度?；蚪M滴度一般采用qPCR、ddPCR、染料法、UV/Vis等方法來(lái)測(cè)定；衣殼滴度主要是通過(guò)ELISA、HPLC等方法來(lái)測(cè)定。AAV基因組滴度檢測(cè)的關(guān)鍵在于盡可能徹底去除AAV衣殼外的HCD殘留，減少污染核酸對(duì)qPCR或ddPCR的影響。經(jīng)典方法是加入常規(guī)核酸酶（如Dnase I、Benzonase等）消化AAV衣殼外的HCD殘留，然后加入Proteinase K破碎病毒衣殼，進(jìn)行后續(xù)檢測(cè)。經(jīng)過(guò)對(duì)比發(fā)現(xiàn)，用SAN HQ高鹽核酸酶替代常規(guī)核酸酶處理AAV病毒，能夠更高效去除衣殼外的核酸殘留，qPCR或ddPCR結(jié)果重復(fù)性更高、更穩(wěn)定。SAN HQ終產(chǎn)品放行檢測(cè)包括微生物、Fungus及Endotoxin檢測(cè)等；安徽500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-150

相比之下，常規(guī)的酶類(lèi)需要更高溫度才能滅活。因此，SAN HQ高鹽核酸酶更適于自動(dòng)化流程；山西基因藥物生產(chǎn)用高鹽核酸酶70921

桿狀病毒表達(dá)載體體系Baculovirus/Sf9(Baculovirusexpression vector，BEV)，是應(yīng)用桿狀病毒表達(dá)載體(BEV)系統(tǒng)infect昆蟲(chóng)細(xì)胞Sf9，是一種替代哺乳動(dòng)物包裝細(xì)胞系的生產(chǎn)方案。整個(gè)系統(tǒng)包含兩種BEV，其中一個(gè)BEV攜帶兩側(cè)有ITRs的目的基因，另一BEV則攜帶rep/cap基因。這兩種BEV同時(shí)infectSf9即可組裝AAV。由于桿狀病毒具有輔助功能，因此BEV系統(tǒng)與可以穩(wěn)定表達(dá)rep的Sf9細(xì)胞相結(jié)合，可用于靈活的、高滴度的大規(guī)模載體生產(chǎn)。BEV體系安全性好,infection效率高,生產(chǎn)工藝較之sTT更易放大，有更高的體積生產(chǎn)率優(yōu)勢(shì)。山西基因藥物生產(chǎn)用高鹽核酸酶70921