穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細胞系的篩選:生長的細胞比不分裂的細胞更快的受到GENETICIN物品的影響。轉(zhuǎn)染后,在開始篩選前等待48-72小時,使細胞表達足夠量的抗性酶,保證在開始篩選時可以自我保護。轉(zhuǎn)染后48-72小時倒掉培養(yǎng)基,加入含有GENETICIN物品的培養(yǎng)基,物品的濃度根據(jù)劑量反應(yīng)曲線確定,足夠殺死未轉(zhuǎn)染細胞。因為許多因子影響到篩選所需的GENETICIN物品的較佳濃度,包括細胞類型,培養(yǎng)基和血清濃度等,所以有必要對每種細胞作一個劑量反應(yīng)曲線,確定較佳濃度。篩選較多可能需要一周時間,因為在致死劑量的GENETICIN物品存在條件下,細胞會分裂1-2次。在次培養(yǎng)細胞時使用較低劑量的物品,一般是篩選劑量的一半。篩選后的細胞一般是離散的克隆,根據(jù)實驗?zāi)康牟煌?,可以分別純化(克?。?,收集進行大量培養(yǎng)或染色并進行抗性克隆的計數(shù)。細胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細胞密度根據(jù)不同的細胞類型或應(yīng)用而異。廣州正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家批發(fā)價

細胞轉(zhuǎn)染簡介:轉(zhuǎn)染,是將外源性基因?qū)爰毎麅?nèi)的一種專門技術(shù)。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉(zhuǎn)染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉(zhuǎn)染大致可分為物理介導(dǎo)、化學(xué)介導(dǎo)和生物介導(dǎo)三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因?qū)儆谕ㄟ^物理方法將基因?qū)爰毎姆独?;化學(xué)介導(dǎo)方法很多,如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染方法、和多種陽離子物質(zhì)介導(dǎo)的技術(shù);生物介導(dǎo)方法,有較為原始的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)染,和現(xiàn)在比較多見的各種細菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù)。理想細胞轉(zhuǎn)染方法,應(yīng)該具有轉(zhuǎn)染效率高、細胞毒性小等優(yōu)點。細菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù),是目前轉(zhuǎn)染效率較高的方法,同時具有細胞毒性很低的優(yōu)勢。但是,細菌轉(zhuǎn)染方法的準(zhǔn)備程序復(fù)雜,常常對細胞類型有很強的選擇性,在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學(xué)介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染方法,則各有其特點。南京細胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家現(xiàn)貨形成DNA脂復(fù)合物,也能被表面帶負電的細胞膜吸附。

細胞轉(zhuǎn)染為什么不能加血清:不同的細胞及轉(zhuǎn)染試劑要求轉(zhuǎn)染的條件是不同的。較好是在靠前次實驗前做一個預(yù)實驗,比如:HeLa,293,CHO,COS7,MCF-7,HepG2等細胞,是否加血清,對不同的細胞是有不同的影響的,有些細胞是可以有血清的,有些加血清就會受影響。轉(zhuǎn)染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基,其一因為普通轉(zhuǎn)染試劑對細胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的細胞的死亡。轉(zhuǎn)染時不加血清是防止血清的干擾作用,轉(zhuǎn)染后可適時加入。加入過早會引起未轉(zhuǎn)染細胞的優(yōu)勢生長,過晚會引起較多細胞死亡??蓪崟r觀察1/5細胞變圓的時候加入血清
轉(zhuǎn)染的注意事項:細胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細胞密度根據(jù)不同的細胞類型或應(yīng)用而異。一般轉(zhuǎn)染時,貼壁細胞密度為70%-90%,懸浮細胞密度為2×106-4×106細胞/ml時效果較好。確保轉(zhuǎn)染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉(zhuǎn)染效率對細胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細胞產(chǎn)量。在三種不同密度進行細胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應(yīng)增加了。這些結(jié)果說明,對于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質(zhì)體試劑的量會因細胞密度而異通過實驗優(yōu)化合適的轉(zhuǎn)染條件對于轉(zhuǎn)染效率的提高很重要。

細胞轉(zhuǎn)染簡介:轉(zhuǎn)染,是將外源性基因?qū)爰毎麅?nèi)的一種專門技術(shù)。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉(zhuǎn)染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉(zhuǎn)染大致可分為物理介導(dǎo)、化學(xué)介導(dǎo)和生物介導(dǎo)三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因?qū)儆谕ㄟ^物理方法將基因?qū)爰毎姆独?;化學(xué)介導(dǎo)方法很多,如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染方法、和多種陽離子物質(zhì)介導(dǎo)的技術(shù);生物介導(dǎo)方法,有較為原始的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)染,和現(xiàn)在比較多見的各種細菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù)。理想細胞轉(zhuǎn)染方法,應(yīng)該具有轉(zhuǎn)染效率高、細胞毒性小等優(yōu)點。細菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù),是目前轉(zhuǎn)染效率較高的方法,同時具有細胞毒性很低的優(yōu)勢。瞬時轉(zhuǎn)染的細胞中,外源基因得以表達但它們并不會整合到細胞的基因組中。無錫正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家批發(fā)價
瞬時表達分析所需的人力和時間比穩(wěn)定表達少。廣州正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家批發(fā)價
轉(zhuǎn)染技術(shù):國際上推出了一些陽離子聚合物基因轉(zhuǎn)染技術(shù),以其適用宿主范圍廣,操作簡便,對細胞毒性小,轉(zhuǎn)染效率高受到研究者們的青睞。其中樹枝狀聚合物(Dendrimers)和聚乙烯亞胺(Polyethylenimine,PEI)的轉(zhuǎn)染性能較佳,但樹枝狀聚合物的結(jié)構(gòu)不易于進一步改性,且其合成工藝復(fù)雜。聚乙烯亞胺是一種具有較高的陽離子電荷密度的有機大分子,每相隔二個碳個原子,即每“第三個原子都是質(zhì)子化的氨基氮原子,使得聚合物網(wǎng)絡(luò)在任何pH下都能充當(dāng)有效的“質(zhì)子海綿”(protonsponge)體。這種聚陽離子能將各種報告基因轉(zhuǎn)入各種種屬細胞,其效果好于脂質(zhì)聚酰胺,經(jīng)進一步的改性后,其轉(zhuǎn)染性能好于樹枝狀聚合物,而且它的細胞毒性低。大量實驗證明,PEI是非常有希望的基因治好載體。目前在設(shè)計更復(fù)雜的基因載體時,PEI經(jīng)常做為中心組成成分。廣州正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家批發(fā)價
細胞轉(zhuǎn)染實驗簡介:實驗原理外源基因進入細胞主要有四種方法:電擊法、磷酸鈣法和脂質(zhì)體介導(dǎo)法和細菌介導(dǎo)法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質(zhì)粒進入;磷酸鈣法和脂質(zhì)體法是利用不同的載體物質(zhì)攜帶質(zhì)粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進入細胞;細菌法是利用包裝了外源基因的細菌傳染細胞的方法使得其進入細胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實驗條件控制較嚴、難度較大;細菌法的前期準(zhǔn)備較復(fù)雜、而且可能對于細胞有較大影響;所以現(xiàn)在對于很多普通細胞系,一般的瞬時轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法。細胞密度以及轉(zhuǎn)染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素。南京細胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家直銷細胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾...